Haselmaus  (Muscardinus avellanarius (Linnaeus, 1758))

• Suche nach Nestern (Freinester), da die Haselmaus bis zu 6 Nester pro Individuum anlegt.
  • Verlassene Nester in der laubfreien Zeit geben Auskunft über das Vorkommen der Art.
• Sofern trotz geeigneter Habitate im Verbreitungsgebiet der Art keine Nachweise von Nestern erzielt werden, muss das Ergebnis durch Kartierung mittels Ausbringen spezieller Nistgelegenheiten (Haselmauskästen, "Haselmaus-Tubes", ggf. Hafthaarröhren oder Spurtunnel) überprüft werden (s. 1.1.2)

• Ausbringen spezieller Nistgelegenheiten (Haselmauskästen, "Haselmaus-Tubes", ggf. Hafthaarröhren oder Spurtunnel) in geeignetem Habitat in ca. 1,5 – 2 m Höhe.
• Sie sollten gut in die Vegetation eingefügt werden. In Hochwäldern ohne stärkeren Unterwuchs ist aufgrund der möglicherweise verringerten Nachweiswahrscheinlichkeit in den Kunstverstecken eine Konzentration von Nistkästen/Niströhren auf die oftmals strukturreicheren Randbereiche empfehlenswert (Landesamt für Landwirtschaft, Umwelt und Ländliche Räume 2018: 9).
• Standardmäßig ist eine Kombination aus Kästen und sog. Tubes vorzusehen, wobei nach Angaben von Lang et al. (2018: 46) Tubes gegenüber Kästen bevorzugt angenommen werden.
  • Holz-, oder Holzbetonkästen mit stammseitigem Eingang, Einstiegloch kleiner 30 mm Durchmesser zur Konkurrenzvermeidung zu Siebenschläfer. 6 – 10 Kästen / ha Waldgebiet, jedoch mindestens 20 Kästen pro untersuchtem Waldgebiet (jeweils abhängig von Größe und Habitatstruktur).
• Werden Spurtunnel genutzt, sollten pro Fläche möglichst 25 Stk. verwendet werden. Anbringung an waagerechte Äste ab 1m Höhe
• Eine Anleitung zum Bau von Spurtunneln findet sich u.a. hier: https://naturmuseum.tg.ch/public/upload/assets/59840/BauanleitungTippsSpurentunnelKleinsaeugetiere.pdf
  • 12 – 20 Tubes / ha Waldgebiet, jedoch mindestens 20.
  • 10 Hafthaarröhren pro 1 ha Fläche in geeignetem Habitat für mindestens 10 - 14 Tage.

• Freinestersuche ab Oktober bis Mitte November. 1 Kontrolldurchgang.
• Ausbringen der Kästen / Tubes ab März. Kontrolle der Kästen, Tubes , Spurtunnel oder Hafthaarröhren zwischen (April) Mai und (September) Oktober, d.h. Quartiersuchphase im Frühjahr und die aktive Phasen von Adulten und Jungtieren im Spätsommer, im 4-wöchigen Turnus. Mind. 5 Kontrollen.
• Die Nachweiswahrscheinlichkeit von Haselmäusen steigt mit der Dauer des Einsatzes von künstlichen Verstecken im Freiland (siehe: Bright et al. 2014: 27).

• Von den nachgewiesenen Individuen werden Geschlecht, Reproduktionszustand und Alter erfasst.
• Kartographische Auswertung der Artnachweise getrennt nach Erhebungsmethodik.
• Determination der Haare (kann nach DEBROT et al. 1982 erfolgen), ist u.U. jedoch schwierig. Die visuelle Spurerkennung der Haselmaus in "Spurtunneln" ist vergleichsweise einfacher durchzuführen (vgl. u.a. https://www.meldestelle.gartenschlaefer.de/documents/20178/21515/gartenschlaefer_spuren_bestimmen.pdf/ee2cc86c-87cd-4d82-a67f-84436407cc70).

• Die o.g. Methoden können jeweils einzeln, am besten jedoch in Kombination zum Nachweis der Art ausreichen. Genauere Informationen zur Populationsstruktur und –größe sind nur mit den unter 1.2 angegebene Methoden zu erreichen (s. Punkt 1.2).
• Neben den o.g. Methoden können Fraßspuren an Haselnüssen ergänzend Hinweise auf Artvorkommen geben, sofern die Hasel vorkommt. Identifizieren lassen sich die arttypischen Fraßspuren anhand Größe und Form der Löcher sowie anhand der Art der Zahnspuren (vgl. Juskaitis u. Büchner 2010).
• Z.B. zur Klärung der Eignung von Verbringungsflächen sollte die Dichte der Nuss- und Beerensträucher und deren Vernetzung sowie die Eignung der Streuschicht als Winterquartier zusätzlich aufgenomen werden.
• In manchen Jahren/Gebieten herrscht sehr hoher Konkurrenzdruck durch Apodemus Arten. Die geforderte Mindestanzahl an Kästen und Tuben sollte bei Bedarf daran angepasst werden.

Siehe z.B. Verbeylen (2012).

• Erfassung mittels Nistkästen oder Tubes wie unter 1). Individuelle Markierung der erfassten Individuen mittels Fellfarben (für kurzfristige Markierung zu empfehlen) oder Ohrtätowierung (in Ausnahmefällen).
• Oder Ausbringen von Hafthaarröhren (s. unter 1.1) und DNA-Untersuchung.

• Ausbringung der Kästen im April.
• Kontrollen während der frühen Morgenstunden (geringe Störung aufgrund Torporzustands).
• Kontrollen ab Mai bis Mitte Oktober mit 5 Kontrolldurchgängen. Idealer Zeitpunkt Mitte August bis Mitte September, da die Erfassungswahrscheinlichkeit sowohl von aktiven Jungtieren und Adulten am höchsten ist.

• Folgende Daten sind für jedes gefangene Tier zu erheben: Geschlecht, Reproduktionszustand, Alter.
• Zur Erfassung der lokalen Populationsgröße sind Fang-Wiederfang-Berechnungen (z.B. Methode nach Jolly Seber) anzuwenden.
• Labor-Untersuchung der mitrochondrialen DNA der Haarproben (Geschlecht, Struktur der lokalen Population).

• Da die Kästen erst nach einer gewissen Vorlaufzeit angenommen werden, sind diese schon ab April auszubringen.
• Lebendfallenfänge sind zeitlich sehr aufwendig und bedürfen eines sehr kurzen Kontrollrhythmus (alle 4 Std.). Da diese Methode mit sehr hohem Stress für die Tiere verbunden ist, wird diese nicht empfohlen und stattdessen die DNA-Besprobung angeraten, sofern Daten zur Population erforderlich erscheinen (Nachweis von Barrieren, Populationsstruktur).